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淋巴細胞雜交瘤單克隆抗體技術

點擊次數：3294 更新時間：2020-06-11

淋巴細胞雜交瘤單克隆抗體技術液氮罐

1975年，Kohler和Milstein發(fā)現(xiàn)將小鼠骨髓瘤細胞和綿羊紅細胞免疫的小鼠脾細胞進行融合，形成的雜交細胞既可產生抗體，又可無限增殖，從而創(chuàng)立了單克隆抗體雜交瘤技術。這一技術上的突破不僅為醫(yī)學與生物學基礎研究開創(chuàng)了新紀元，也為臨床疾病的診、防、治提供了新的工具。

制備單克隆抗體包括動物免疫、細胞融合、選擇雜交瘤、檢測抗體、雜交瘤細胞的克隆化、凍存以及單克隆抗體的大量生產，要經過幾個月的一系列實驗步驟，下面按照制備單克隆抗體的流程順序，逐一介紹其實驗方法。

一、細胞融合前準備

(一) 免疫方案

選擇合適的免疫方案對于細胞融合雜交的成功，獲得高質量的McAb至關重要。一般要在融合前兩個月左右確立免疫方案開始初次免疫，免疫方案應根據抗原的特性不同而定。

1. 顆粒性抗原免疫性較強，不加佐劑就可獲得很好的免疫效果。下面以細胞性抗原為例的免疫方案:

初次免疫 1×107/0.5ml ip (腹腔內注射)

↓ 2～3周后

第二次免疫 1×107/0.5ml ip

↓ 3周后

加強免疫(融合前三天) 1×107/0.5ml ip或iv(靜脈內注射)

↓

取脾融合

2. 可溶性抗原免疫原性弱，一般要加佐劑，常用佐劑：福氏*佐劑，福氏不*佐劑。要求抗原和佐劑等體積混合在一起，研磨成油包水的乳糜狀，放一滴在水面上不易馬上擴散呈小滴狀表明已達到油包水的狀態(tài)。商品化福氏*佐劑在使用前須振搖，使沉淀的分枝桿菌充分混勻。

初次免疫 Ag 1～50μg 加福氏*佐劑皮下多點注射

│ (一般0.8～1ml 0.2ml/點)

↓3周后

第二次免疫劑量同上，加福氏不*佐劑皮下或ip

│ (ip劑量不宜超過0.5ml)

↓3周后

第三次免疫劑量同上，不加佐劑，ip

│ (5～7天后采血測其效價，檢測免疫效果)

↓2～3周后

加強免疫，劑量50～500μg為宜，ip或iv

↓3天后

取脾融合

目前，用于可溶性抗原(特別是一些弱抗原)的免疫方案也不斷有所更新，如①將可溶性抗原顆粒化或固相化，一方面增強了抗原的免疫原性，另一方面可降低抗原的使用量。②改變抗原注入的途徑，基礎免疫可直接采用脾內注射。③使用細胞因子作為佐劑，提高機體的免疫應答水平，促進免疫細胞對抗原反應性。液氮罐

(二) 飼養(yǎng)細胞

在制備單克隆抗體過程中，許多環(huán)節(jié)需要加飼養(yǎng)細胞，如：在雜交瘤細胞篩選、克隆化和擴大培養(yǎng)過程中，加入飼養(yǎng)細胞是十分必要的。常用的飼養(yǎng)細胞有：小鼠腹腔巨噬細胞(較為常用)、小鼠脾臟細胞或小鼠胸腺細胞，也有人用小鼠成纖維細胞系3T3經放射線照射后作為飼養(yǎng)細胞，使用比較方便，照射后可放入液氮罐長期保存，隨用隨復蘇。

小鼠腹腔巨噬細胞的制備

小鼠采用與免疫小鼠相同的品系，常用BaLb/c小鼠6～10周齡

↓

拉頸處死浸泡于75%酒精，消毒3～5分鐘

↓

用無菌剪刀剪開皮膚，暴露腹膜

↓

用無菌注射器注入6～8ml培養(yǎng)液

↓

反復沖洗，吸出沖洗液

↓

放入10ml離心管，1200轉/分離心5～6分鐘

↓

用20%小牛血清(NCS)或胎牛血清(FCS)的培養(yǎng)液混懸，調整細胞數1×105/ml

↓

加入96孔板，100μl/孔

↓

放入37℃ CO2孵箱培養(yǎng)

一般飼養(yǎng)細胞在融合前一天制備，一只小鼠可獲得5～8×106腹腔巨噬細胞，若用小鼠胸腺細胞作為飼養(yǎng)細胞時，細胞濃度為5×106/ml，小鼠脾細胞為1×106/ml，小鼠的成纖維細胞(3T3)1×105/ml，均為100μl/孔。

(三) 骨髓瘤細胞

骨髓瘤細胞系應和免疫動物屬于同一品系，這樣雜交融合率高，也便于接種雜交瘤細胞在同一品系小鼠腹腔內產生大量 McAb。

常用骨髓瘤細胞系有：NS1、SP2/0、X63 Ag8.653等。

骨髓瘤細胞的培養(yǎng)適合于一般的培養(yǎng)液，如RPMI1640，DMEM培養(yǎng)基。小牛血清的濃度一般在10～20%，細胞的**密度不得超106/ml，一般擴大培養(yǎng)以1∶10稀釋傳代，每3～5天傳代一次。細胞的倍增時間為16～20小時，上述三株骨髓瘤細胞系均為懸浮或輕微貼壁生長，只用彎頭滴管輕輕吹打即可懸起細胞。

一般在準備融合前的兩周就應開始復蘇骨髓瘤細胞，為確保該細胞對HAT的敏感性，每3～6月應用8～AG(8氮雜鳥嘌呤)篩選一次，以防止細胞的突變。

保證骨髓瘤細胞處于對數生長期，良好的形態(tài)，活細胞計數高于95%，也是決定細胞融合的關鍵。

(四) 免疫脾細胞

免疫脾細胞指的是處于免疫狀態(tài)脾臟中B淋巴母細胞棗漿母細胞。一般取*后一次加強免疫3天以后的脾臟，制備成細胞懸液，由于此時B淋巴母細胞比例較大，融合的成功率較高。

脾細胞懸液的制備：在無菌條件下取出脾臟，用不*的培養(yǎng)液洗一次，置平皿中不銹鋼篩網上，用注射器針芯研磨成細胞懸液后計數。一般免疫后脾臟體積約是正常鼠脾臟體積的2倍，細胞數為2×108左右。液氮罐

二、細胞融合，選擇雜交瘤

(一) 細胞融合流程

(1) 取對數生長的骨髓瘤細胞SP2/0，1000rpm離心5分鐘，棄上清，用不*培養(yǎng)液混懸細胞后計數，取所需的細胞數，用不*培養(yǎng)液洗滌2次。

(2) 同時制備免疫脾細胞懸液，用不*培養(yǎng)液洗滌2次。

(3) 將骨髓瘤細胞與脾細胞按1∶10或1∶5的比例混合在一起，在50ml塑料離心管內用不*培養(yǎng)液洗1次，1200rpm,8分鐘。

(4) 棄上清，用滴管吸凈殘留液體，以免影響PEG的濃度。

(5) 輕輕彈擊離心管底，使細胞沉淀略加松動。

(6) 在室溫下融合:

① 30秒內加入預熱的1ml45%PEG(Merek,分子量4000)含5%DMSO，邊加邊攪拌。

② 作用90秒鐘，若冬天室溫較低時可延長至120秒鐘。

③ 加預熱的不*培養(yǎng)液，終止PEG作用，每隔2分鐘分別加入1ml，2ml，3ml，4ml，5ml和10ml。

(7) 離心，800rpm，6分鐘。

(8) 棄上清，先用6ml左右20%小牛血清RPMI1640輕輕混懸，切記不能用力吹打，以免使融合在一起的細胞散開。

(9) 根據所用96孔培養(yǎng)板的數量，補加*培養(yǎng)液，10ml一塊96孔板。

(10) 將融合后細胞懸液加入含有飼養(yǎng)細胞的96孔板，100μl/孔，37℃、5%CO2孵箱培養(yǎng)。

一般一塊96孔板含有1×107脾細胞。

(二) HAT選擇雜交瘤

應用HAT 選擇培養(yǎng)液篩選雜交瘤細胞的原理已在研究生專題講座第六專題中已經提到，這里主要介紹加HAT選擇培養(yǎng)的時間和濃度。

一般在融合24小時后，加HAT選擇培養(yǎng)液。HT和HAT均有商品化試劑50×貯存，用時1ml加入50ml20%小牛血清*培養(yǎng)液中。

因為在培養(yǎng)板內已加入飼養(yǎng)細胞、融合后的細胞，200μl/孔。所以在加選擇培養(yǎng)液時應加3倍量的HAT。我們認為，融合后*初補加的量可用全量的2/3進行選擇，可得到滿意的篩選結果。

50×HAT

H: 5×10-3M

A: 2×10-5M

T: 8×10-4M

一般選擇HAT選擇培養(yǎng)液維持培養(yǎng)兩周后，改用HT培養(yǎng)液，再維持培養(yǎng)兩周，改用一般培養(yǎng)液。

三、抗體的檢測

篩選雜交瘤細胞通過選擇性培養(yǎng)而獲得雜交細胞系中，僅少數能分泌針對免疫原的特異性抗體。一般在雜交瘤細胞布滿孔底1/10面積時，即可開始檢測特異性抗體，篩選出所需要的雜交瘤細胞系。

檢測抗體的方法應根據抗原的性質、抗體的類型不同，選擇不同的篩選方法，一般以快速、簡便、特異、敏感的方法為原則。

常用的方法有:

1. ELISA用于可溶性抗原(蛋白質)、細胞和病毒等McAb的檢測。

2. RIA用于可溶性抗原、細胞McAb的檢測。

3. FACS(熒光激活細胞分類儀)用于檢查細胞表面抗原的McAb檢測。

4. IFA用于細胞和病毒McAb的檢測。

上述方法均為一般實驗室的常規(guī)方法，故在此不介紹具體的實驗過程。

可靠的篩選方法必須在融合前建立，避免由于方法不當貽誤整個篩選時機。

四、雜交瘤的克隆化和凍存

克隆化一般是指將抗體陽性孔進行克隆化。犚r為經過HAT篩選后的雜交瘤克隆不能保證一個孔內只有一個克隆。在實際工作中，可能會有數個甚至更多的克隆，可能包括抗體分泌細胞、抗體非分泌細胞;所需要的抗體(特異性抗體)分泌細胞和其它無關抗體分泌細胞。要想將這些細胞彼此分開，就需要克隆化。克隆化的原則是，對于檢測抗體陽性的雜交克隆應盡早進行克隆化，否則抗體分泌的細胞會被抗體非分泌的細胞所抑制，因為抗體非分泌細胞的生長速度比抗體分泌的細胞生長速度快，二者競爭的結果會使抗體分泌的細胞丟失。即使克隆化過的雜交瘤細胞也需要定期的再克隆，以防止雜交瘤細胞的突變或染色體丟失，從而喪失產生抗體的能力。

(一) 克隆化方案

用克隆化的方法很多，而*常用就是有限稀釋和軟瓊脂平板法。

1. 有限稀釋法的程序

① 制備飼養(yǎng)細胞懸液(同融合前準備)

② 陽性孔細胞的計數，并調細胞數在1～5×103/ml

③ 取130個細胞放入6.5ml含飼養(yǎng)細胞*培養(yǎng)液，即20個細胞/ml，100μl/孔加A、B、C三排為每孔2個細胞。余下2.9ml細胞懸液補加2.9ml含飼養(yǎng)細胞的*培養(yǎng)液,細胞數為10個/ml，100μl/孔加D、E、F三排，為每孔1個細胞。余下2.2ml細胞懸液補加2.2ml 含飼養(yǎng)細胞的*培養(yǎng)液，細胞數5個/ml，100μl/孔，加G、H兩排，為每孔0.5個細胞。

④ 培養(yǎng)4～5天后，在倒置顯微鏡上可見到小的細胞克隆，補加*培養(yǎng)液200μl/孔。

⑤ 第8～9天時，肉眼可見細胞克隆，及時進行抗體檢測。

注:初次克隆化的雜交瘤細胞需要在*培養(yǎng)液中加HT。

2. 軟瓊脂法

① 軟瓊脂的配制

含20%FCS(小牛血清)的2倍濃縮的RPMI1640

1%瓊脂水溶液：高壓滅菌，42℃預熱。

0.5%瓊脂：由1份1%瓊脂加1份含20%小牛血清的2倍濃縮的RPMI1640配制而成。置42℃保溫。

② 用上述0.5%瓊脂液(含有飼養(yǎng)細胞)15ml傾注于直徑為9cm的平皿中，在室溫中待凝固后作為基底層備用。

③ 按100/ml，500/ml或5000/ml等濃度配制需克隆的細胞懸液。

④ 1ml 0.5%瓊脂液(42℃預熱)在室溫中分別與1ml不同濃度的細胞懸液相混合。

⑤ 混勻后立即傾注于瓊脂基底層上，在室溫中10分鐘，使其凝固，孵育于37℃，5%CO2孵箱中。

⑥ 4～5天后即可見針尖大小白色克隆，7～10天后，直接移種至含飼養(yǎng)細胞的24孔板中進行培養(yǎng)。

⑦ 檢測抗體，擴大培養(yǎng)，必要時再克隆化。

(二) 雜交瘤細胞的凍存

及時凍存原始孔的雜交瘤細胞、每次克隆化得到的亞克隆細胞是十分重要的。因為在沒有建立一個穩(wěn)定分泌抗體的細胞系的時候，細胞的培養(yǎng)過程中隨時可能發(fā)生細胞的污染、分泌抗體能力的喪失等等。如果沒有原始細胞的凍存，則因為上述的意外而全功盡棄。

雜交瘤細胞的凍存方法同其他細胞系的凍存方法一樣，原則上細胞應在每支安瓿含1×106以上，但對原始孔的雜交瘤細胞可以因培養(yǎng)環(huán)境不同而改變，在24孔培養(yǎng)板中培養(yǎng)，當長滿孔底時，一孔就可以凍一支安瓿。

細胞凍存液:

50%小牛血清

40%不*培養(yǎng)液

10% DMSO(二甲亞砜)

凍存液**預冷，操作動作輕柔、迅速。凍存時從室溫可立即降到0℃，再降溫時一般按每分鐘降溫2～3℃，待降至-70℃可放入液氮中。或細胞管降至 0℃ 后放-70℃超低溫冰箱，次日轉入液氮中。也可以用細胞凍存裝置進行凍存。凍存細胞要定期復蘇，檢查細胞的活性和分泌抗體的穩(wěn)定性，在液氮中細胞可保存數年或更長時間。

五、單克隆抗體的大量生產

大量生產單克隆抗體的方法主要有兩種：

1. 體外使用旋轉培養(yǎng)管大量培養(yǎng)雜交瘤細胞，從上清中獲取單克隆抗體。但此方法產量低，一般培養(yǎng)液含量為10～60μg/ml，如果大量生產，費用較高。

2. 體內接種雜交瘤細胞，制備腹水或血清。液氮罐

① 實體瘤法對數生長期的雜交瘤細胞按1～3×107/ml接種于小鼠背部皮下，每處注射0.2 ml, 共2～4點。待腫瘤達到一定大小后(一般10～20天)則可采血，從血清中獲得單克隆抗體含量可達到1-10mg/ml。但采血量有限。

② 腹水的制備常規(guī)是先腹腔注射0.5mlPristane(降植烷)或液體石臘于BaLb/c鼠，1～2周后腹腔注射1×106個雜交瘤細胞，接種細胞7～10天后可產生腹水，密切觀察動物的健康狀況與腹水征象，待腹水盡可能多，而小鼠頻于死亡之前，處死小鼠，用滴管將腹水吸入試管中，一般一只小鼠可獲1～10ml腹水。也可用注射器抽取腹水，可反復收集數次。腹水中單克隆抗體含量可達5-20mg/ml，這是目前*常用的方法，還可將腹水中細胞凍存起來，復蘇后轉種小鼠腹腔則產生腹水快、量多。

六、單克隆抗體的鑒定

對制備的McAb進行系統(tǒng)的鑒定是十分必要的。應對其做如下方面的鑒定:

1. 抗體特異性的鑒定：除用免疫原(抗原)進行抗體的檢測外，還應用與其抗原成分相關的其它抗原進行交叉試驗，方法可用ELISA、IFA法。例如① 制備抗黑色素瘤細胞的McAb，除用黑色素瘤細胞反應外，還應用其它臟器的腫瘤細胞和正常細胞進行交叉反應，以便挑選腫瘤特異性或腫瘤相關抗原的單克隆抗體。② 制備抗重組的細胞因子的單克隆抗體，應首先考慮是否與表達菌株的蛋白有交叉反應，其次是與其它細胞因子間有無交叉。

2. McAb的Ig類與亞類的鑒定：一般在用酶標或熒光素標記的第二抗體進行篩選時，已經基本上確定了抗體的Ig類型。如果用的是酶標或熒光素標記的兔抗鼠IgG或IgM，則檢測出來的抗體一般是IgG類或IgM類。至于亞類則需要用標準抗亞類血清系統(tǒng)作雙擴或夾心ELISA來確定McAb的亞類。在作雙擴試驗時，如加入適量的PEG(3%)，將有利于沉淀線的形成。

3. McAb中和活性的鑒定：用動物的或細胞的保護實驗來確定McAb的生物學活性。例如如果確定抗病毒McAb的中和活性，則可用抗體和病毒同時接種于易感的動物或敏感的細胞，來觀察動物或細胞是否得到抗體的保護。

4. McAb識別抗原表位的鑒定：用競爭結合試驗、測相加指數的方法，測定McAb所識別抗原位點，來確定McAb的識別的表位是否相同。

5. McAb親和力的鑒定：用ELISA或RIA競爭結合試驗來確定McAb與相應抗原結合的親和力。

七、影響因素、失敗原因分析

由于制備McAb的實驗周期長，環(huán)節(jié)多，所以影響因素就比較多，稍不注意就會造成失敗。

其主要失敗原因和影響因素有:

1. 污染：包括細菌、霉菌和支原體的污染。這是雜交瘤工作中*辣手的問題。一旦發(fā)現(xiàn)有霉菌污染就應及早將污染板棄之，以免污染整個培養(yǎng)環(huán)境。支原體的污染主要來源于牛血清，此外，其它添加劑、實驗室工作人員及環(huán)境也可能造成支原體污染。在有條件的實驗室，要對每一批小牛血清和長期傳代培養(yǎng)的細胞系進行支原體的檢查，查出污染源應及時采取措施處理。對于污染的雜交瘤細胞可以采取生物學的過濾方法，將污染的雜交瘤細胞注射于BALB/c小鼠的腹腔，待長出腹水或實體瘤時，犖^菌取出分離雜交瘤細胞，一般可除去支原體污染。液氮罐

2. 融合后雜交瘤不生長：在保證融合技術沒有問題的前提下主要考慮下列因素①PEG有毒性或作用時間過長。②牛血清的質量太差，用前沒有進行嚴格的篩選。③骨髓瘤細胞污染了支原體。④HAT有問題，主要是A含量過高或HT含量不足。

3. 雜交瘤細胞不分泌抗體或停止分泌抗體

① 融合后有細胞生長，但無抗體產生，可能是HAT中A失效或骨髓瘤細胞發(fā)生突變，變成A抵抗細胞所致。

② 有可能是免疫原抗原性弱，免疫效果不好。

③ 對于原分泌抗體的雜交瘤細胞變?yōu)殛幮裕赡苁羌毎гw污染，或非抗體分泌細胞克隆競爭性生長，從而抑制了抗體分泌細胞的生長。也可能發(fā)生染色體丟失。Goding91982)曾提出“三要”“三不要”，可能是防止抗體停止分泌的有效措施。

三要:

要大量保持和補充液氮凍存的細胞原管。

要應用倒置顯微鏡經常檢查細胞的生長狀況。

要定期進行再克隆。

三不要:

不要讓細胞“過度生長”。因為非分泌的雜交瘤細胞將成為優(yōu)勢，壓倒分泌抗體的雜交瘤細胞。

不要讓培養(yǎng)物不加檢查地任其連續(xù)培養(yǎng)幾周或幾個月。